The role of NOD2/RIPK2 signaling in the pathogenesis of Parkinson's Disease
Johns Hopkins University, Baltimore MD
Investigators
Linked publications, trials & patents
Abstract
PROJECT SUMMARY  Growing evidence suggest that central nervous system (CNS) inflammation is a major pathophysiological process in Parkinsonâs disease (PD). The inflammation is characterized by an increase in the number of microglia and in the levels of proinflammatory cytokines and chemokines. The proinflammatory cytokines, which are released when microglia are activated, could exacerbate α-Âsynuclein (α-Âsyn) aggregation and neuronal death ultimately driving the chronic progression of PD. Dying or dead dopaminergic neurons released α-Âsyn aggregates can be taken up into the microglia, which leads to microglia activation. This in turn contributes to the accelerated progression of neurodegenerative processes. Therefore, identification of molecular targets in microglia that can be modulated to inhibit their inflammatory response may provide new strategy for the treatment of PD. However, there is a lack of knowledge about the cellular mechanisms underlying microglia-Âmediated neuroinflammatory events following stimulation with α-Âsyn aggregates. To gain a comprehensive understanding of the cellular mechanisms of α-Âsyn aggregates induced microglial activation, we conducted RNAseq analysis using α-Âsyn preformed fibrils (α-Âsyn PFF) activated microglia. From the screening, we identified NOD2/RIPK2 complex as a key modulator in neuroinflammatory responses due to α-Âsyn aggregate. In our preliminary studies, we found that α-Âsyn aggregates activate NOD2/RIPK2 mediated inflammatory responses in microglia to exacerbates neuronal death through a series of signaling events, which included M1 microglial activation and toxic A1 type astrocytes conversion by secreting IL-Â1α, TNFα and C1q. On the other hand, we found that the depletion of NOD2/RIPK2 complex protects neuronal death via blocking microglia-Âmediated A1 astrocyte conversion in vitro and in vivo. To further confirm and expand our novel preliminary findings, we will systematically pursue the following specific aims: (i) to define the levels of NOD2, RIPK2 mRNAs and proteins and the levels of phosphorylation of RIPK2 in microglia in mouse models of α-Âsyn induced degeneration and PD postmortem brains, ii) to characterize the interaction between NOD2 and α-Âsyn aggregates in microglia and define how α-Âsyn PFF binding to NOD2 affects NOD2/RIPK2 dependent signaling pathways including RIPK2 activation/ubiquitination and MAPKs and NF-ÂkB activation in microglia, iii) determine the depletion effect of NOD2/RIPK2 signaling in microglia-Âinduced A1 astrocytes formation due to α-Âsyn aggregates both in vitro and in vivo, and (iv) to determine the effects of blocking of NOD2/RIPK2 signaling in α-Âsyn PFF induced model of PD through genetic ablation of NOD2 and RIPK2 and pharmacological inhibition of RIPK2. Cellular, neurochemical, neuropathological and behavioral approaches in vitro and in vivo will be used to achieve these specific aims. Taken together, understanding the role of NOD2/RIPK2 dependent signaling in α-Âsyn aggregates-Âinduced microglial activation, A1 astrocyte conversion and DA neuronal death will not only provide novel mechanistic insights into the progression of neurodegenerative processes in PD, but also ultimately lead to the development of new therapeutic strategies for PD. Â
View original record on NIH RePORTER →